柱式病毒DNA提取纯化试剂盒是在一管式病毒 DNAOUT 的基础上开发的、专门用于从血清(血 浆)等液体样品及拭子（咽拭子、鼻拭子、口腔拭子、阴道拭子等）中提取微量病毒 DNA 的产品，它具有下列特点：

1. 操作简单，整个过程只需要 20 分钟左右，不需要额外在洗柱液中补加乙醇。

2. 灵敏度高，通过 PCR 检测到的终灵敏度可以达到 30-50 拷贝/mL。

3. 安全无毒。

4. 如果加上病毒离心富集步骤，多可以处理 1.5 mL 液体病毒样品。

5. 与 PCR 和荧光 PCR 兼容。

6. 价廉物美，性价比远高于国外同类产品。

7. 适用于各种材料，包括血清、血浆、脑脊液、尿液、粪便、培养细胞上清液等无 细胞材料。

常温运输及保存，DNA 病毒裂解液长期（1 月以上）放置时需要放 4℃，有效期一年。

1. 如果有 N 个样品，标记 N+2 个 1.5-2 mL 螺旋盖塑料离心管，多出的一个为阳性对照，一个为阴性对照。为避免污染， 建议不要使用压盖式塑料离心管。在每个管上做个标记，以在后续操作时区别向 心面和离心面。然后在离心管中分别加入 0.2 mL 液体样品（血清、血浆、尿液、 脑脊液、唾液、眼泪等等），阳性对照和阴性对照。

1.1、 如果是口腔拭子、咽喉拭子等各种拭子样品，则将拭子放入 0.2mL 自备 生理盐水中挤压出液体，然后取 0.2mL 进行提取。

1.2、 如果是粪便等半固定样品，则取约 0.3mL 的样品，加入 0.3mL 自备生 理盐水，震荡重悬，离心取 0.2mL 上清进行提取。

1.3、 如果血液，细胞培养液等含细胞的液体，可以离心用上清，也可以直接取 用，但后者提取的病毒 DNA 中会有少量细胞的基因组 DNA 污染（但不 影响 PCR）。血浆的抗凝剂必须是 EDTA 或 ACD，不能是肝素。使用 ACD 时由于所加入 ACD 会增加体积，样品会被稀释，得到的病毒滴度 会比使用 EDTA 低 15%左右。血浆按 0.6mL/管的量分装保存，以 避免反复冻融。

1.4、 如果样品是实体组织或培养细胞，则需要在自备生理盐水中匀浆后离心， 用 0.2mL 上清液（含病毒）进行提取，但此种情况下后得到的病毒 DNA 不可避免的会含有少量基因组 DNA 污染（但不影响 PCR 检测）。

1.5、 如果液体样品中的病毒需要富集，可以使用 1.5 mL 上述方法得到的液体 在 4℃ 24,000 g 冷冻离心 60 分钟, 移弃 1.3 mL、用剩下的 0.2mL 继 续操作。

2. 加入 0.6 mL DNA 病毒裂解液到各离心管中，振荡 30 秒混匀后室温放置 10 分 钟裂解病毒。注意：DNA 病毒裂解液在 4℃放置后可能会产生沉淀，使用前必须 放在 65℃水浴使沉淀*溶解并充分摇匀后再取用。

3. 加入 0.8mL 上柱结合液到离心管中，颠倒混匀后转移一半的混合液（0.8mL） 到离心吸附柱中，室温放置 2 分钟。

4. 12,000 rpm 室温离心 1 分钟，弃收集管中的穿透液，把离心吸附柱放回到收集 管中。

5. 将剩余的另外一半裂解液（0.8mL）转移到离心吸附柱中，室温放置 2 分钟。

6. 12,000 rpm 室温离心 1 分钟，弃收集管中的穿透液，把离心吸附柱放回到收集 管中。

7. 加入 0.7 mL 通用洗柱液到离心吸附柱中，12,000 rmp 室温离心 1 分钟，弃收 集管中的穿透液，把离心吸附柱放回到收集管中。

8. 加入 0.3 mL 通用洗柱液到离心吸附柱中，12,000 rmp 室温离心 1 分钟，弃收 集管中的穿透液，把离心吸附柱放回到收集管中。此为第二次洗涤，可以跳过。

9. 12,000 rpm 室温离心 1 分钟（干甩），弃含穿透液的离心管。

10. 将干甩后的离心吸附柱套入到一个自备的 RNase-free 的 1.5 mL 离心管中，在 离心吸附柱的滤膜的中部加入 30-100 uL DNA 洗脱液 3.0，然后室温放置 2 分 钟。

11. 12,000 rpm 室温离心 1 分钟，离心管中的溶液即为病毒 DNA 溶液。

12. DNA 样品可以直接用于 PCR，也可放-20℃长期保存。 

柱式病毒DNA提取纯化试剂盒